Corante de Shorr
A solução corante de Shorr é uma solução para coloração em microscopia para corpos inclusos.[1]
Também trata-se a coloração de Shorr do protocolo (método) de coloração que utiliza esta solução corante.[2]
Aplica-se em tecidos fixados em fixador a base de formol e montados em parafina em seções cortadas de 6 mícrons.
Formulação da solução corante
[editar | editar código-fonte]Soluções estoque
[editar | editar código-fonte]Solução A
[editar | editar código-fonte]- Escarlate de Biebrich a 10% em água destilada (15 gr em 150 ml).
- Ácido fosfomolíbdico a 10% em água destilada (15 gr em 150 ml).
- Ácido fosfotúngstico a 10% em água destilada (15 gr em 150 ml).
Misturar estas três soluções primárias, numa solução homogênea.
Solução B
[editar | editar código-fonte]Verde luz amarelado 10% em água destilada (1,25 gr em 12,50 ml). Nesta solução, é conveniente acrescentar-se 1% (neste caso, para este volume, aproximadamente 0,15 ml, 3 gotas, de glutaraldeído em solução 25% para conservação).
Solução C
[editar | editar código-fonte]Orange G 10% em água destilada (1,25 gr em 12,50 ml).
Observação
[editar | editar código-fonte]Quantidades maiores e proporcionais destas soluções parciais podem ser preparadas previamente.
Preparação final
[editar | editar código-fonte]Vinte quatro horas antes do uso, estas quantidades de soluções prévias produzidas devem ser acrescentadas a 10 ml de ácido acético glacial em 500 ml de álcool etílico 75% aquoso, homogeniza-se e completa-se o volume total a 1 litro com mais álcool etílico a 75%.
Método[2]
[editar | editar código-fonte]- Remover a parafina do tecido montado em xilol. Lavar em álcool absoluto, álcool 95% e água destilada.
- Hematoxilina de Harris, 3 a 5 minutos. Lavar em água.
- Diferenciar em álcool,ácido a 1% até não haver mais hematoxilina no citoplasma das células, (usa-se aqui microscópio).
- Lavar em água, lavar em amônia (solução) até a cor azulada, lavar em água corrente.
- Colocar as lâminas no corante de Shorr por 1 minuto.
- Lavar com álcool a 95%. Verificar usando microscópio. Tecido conjuntivo irá adquirir uma cor verde clara quando a diferenciação estiver completa
- Enxague algumas vezes em álcool absoluto. Algumas vezes em xilol. Montar a amostra para observação posterior e arquivamento.
Resultados
[editar | editar código-fonte]Corpos inclusos: vermelho; tecido conjuntivo: verde claro; tecido elástico: vermelho púrpura; músculos: vermelho; queratina: laranja; eritrócitos: laranja avermelhado; núcleo celular: azul.
Referências
Ligações externas
[editar | editar código-fonte]Citações de aplicações do corante e sua metodologia:
- «Análise do Sêmen para Reprodução Assistida - Centro de reprodução Humana - www.crh.com.br»
- «Caracterização da colpocitologia em capivaras (Hydrochoerus hydrochaeris) - BARBOSA, Larissa Pires; RODRIGUES, Marcos Vinícius; NEVES, Mariana Machado, MORAIS, Danielle Barbosa; MELO, Bruno Edésio dos Santos; BALARINI, Maytê Koch; COELHO, Cláudia Diniz Pinto; MENDONÇA, Cínthia; Revista Brasileira de Saúde e Produção Animal; V. 8, N° 4 (2007) - www.rbspa.ufba.br»
- «Valor diagnóstico da colpocitologia em obstetrícia - Colheita e preparação da amostra; Dr. Nilo Pereira Luz - nilopereiraluz.net»
- ASPECTOS REPRODUTIVOS DA FÊMEA DE MOCÓ (Kerodon rupestris): ANÁLISE BIOQUÍMICA DOS LÍQUIDOS FETAIS E CARACTERIZAÇÃO COLPOCITOLÓGICA DO CICLO ESTRAL; MARIA AMÉLIA ZOGNO; SÃO PAULO; 2002 Arquivo doc